일 | 월 | 화 | 수 | 목 | 금 | 토 |
---|---|---|---|---|---|---|
1 | 2 | 3 | 4 | 5 | 6 | 7 |
8 | 9 | 10 | 11 | 12 | 13 | 14 |
15 | 16 | 17 | 18 | 19 | 20 | 21 |
22 | 23 | 24 | 25 | 26 | 27 | 28 |
29 | 30 | 31 |
- publicspeaking
- 분석
- 사이허브
- 2018계획
- 구글#빅쿼리#데이터분석
- Toastmaster
- 평창
- SQLD
- 데분
- 영화
- CC#3
- 영어연설
- F분포
- 토스트마스터
- 제약
- 엘뱌키안
- 취업
- 공유경제
- 카이제곱분포
- 데이터분석
- 임상통계
- 연설
- 정형데이터
- CC#5
- 데이터
- 대중연설
- PGTM
- 풀러스
- Public Speaking
- 인과추론
- Today
- Total
지지플랏의 DataScience
유전자 조작실험2, ligation 통한 재조합 plasmid 제조 본문
2010-1
화학생명공학실험1 (결과)
실험주차 : 3주차
실험제목 : 유전자 조작실험2, ligation 통한 재조합 plasmid 제조
실험날짜 : 2010년 5월19일
제출날짜 : 2010년 5월 26일
담당교수 :
학번 :
이름 :
- 실험 목적 : 유전공학에서 사용되는 기초실험인 재조합 DNA복제의 제조방법을 이해한다. 제한효소가 처리된 DNA에 ligase를 처리하여 통하여 최종적으로 DNA 분자를 제조한다.
- 실험 방법 및 재료
1)재료
요구 첨가량 준비용액 이용 실제 첨가량 Vector 200 ng 100 ng/μl 2 μl 4 μl Insert 33.3 ng ※ 20 ng/μl 1.67 μl 4 μl Buffer 1 μl Tris HCl 660mM(PH 7.6)
MgCl2 66mM
DDT 10MM
ATP 1mM 1 μl 1 μl Ligase 400 unit 400 unit/ μl 1 μl 1 μl 총량
※ : Vector 양 = insert 양 (단위 : ng)
( Insert size : 0.25 kb vector size : 4.5kb )
2) 실험 방법
(1) 지난 실험에서 추출되었던 Vector Plasmid, Insert 를 buffer와 분리시킨다.
(2) Ligase와 그에 필요한 buffer을 준비하고 vector와 insert DNA를 얼음 위에 녹여둔다.
(3) 다시 ligase효소를 넣어 재조합 하기 전에 알맞은 ligase의 양과 그에 상응하는 buffer의 양 vector와 insert양을 최적의 비율로 반응할 수 있게 계산한다.
(4) 파이펫으로 해당 물질을 적정한다.
(5) 4 ℃ 에서 5 pm~ 9 am 동안 효소 반응을 시켜준다.
(6) 전기 영동으로 DNA의 ligase유무를 확인한다.
(7) 필요에따라 Ethanol 침전법이나 DNA purification kit 를 이용하여 DNA 만을 회수한다.
- 고찰
이번 실험은 목적에서 보다시피 저번 실험에서 제한효소로 잘랐던 DNA를 다시 ligase효소를 이용하여 다시 DNA를 재조합 하는 과정이다. 기본적으로 지난 시간에 결과로 나왔던 plasmid를 이용하여 했기 때문에 조마다 약간 씩 적정해야하는 성분의 양이 달랐다. 우리는 기본적으로 10 µl을 총량으로 하여 계산하였다. Vector를 200ng 을 기준으로 잡고 insert size와 vector size와 관계를 비교해서 적정한 insert 양을 구하는 계산은 molar ratio로 vector : insert= 1:3 ~ 1:10(sticky end ) 또는 1:5 ~ 1:20(blunt end) 였다. Sticky end가 서로 결합을 잘 하고 있는 이유에서 이런 비율의 차이가 난다. 그 결과 33.3 ng 의 insert 가 필요하다는 것을 알았다. 그러기 위해서 1. 67 µl 의 insert을 적정해야 했다. ligase효소를 넣고 그 효소가 최적활성을 가질 수 있는 환경을 꾸며줄 buffer역시 10%비율로 1 µl 을 첨가 하게되었다. 이대로 계산하면 5.67 µl 가 나오는데 우리가 쓴 ligase 는 400 unit / µl 단위로 회사에서 권장하는 양은 400 unit, 그리고 total volume 10 µl 에 비해 부족한 수치였다. 나머지를 UPW로 채울 수 도 있지만 기본적으로 각 성분의 용매로 물이 쓰이므로 DNA의 양을 각각 2배씩 늘리기로 했고 vector는 4 µl, insert 4 µl 를 넣기로 했다. Insert가 기존의 들어갈 양의 2배가 약간 넘는 것은 총 10 µl를 채워주기 위함이 였으며 기본적으로 vector가 정해져 있으므로 insert의 양이 더 많아도 최종 재조합 되는 DNA의 양은 동일하다고 생각되어 시행했다. 또한 실험이 지남에 따라 DNA와 buffer와 다른 물질을 분리하는데 있어서 DNA의 농도가 낮아지는 것은 어쩔 수 없는 현상이므로 부족하지 않게끔 넣은 의미도 있었다. 적정을 다한 후에 반응하는 법은 상온에서 4시간, 4 ℃ 에서 overnight(PM 5 ~ AM 9), 15 ℃에서 4~15hr 의 3가지 방법이 있는데 시간이 낮을수록 오랜 시간 반응을 시킴을 알 수 있다. 우리는 4 ℃에서 일주일간 반응 시킬 것이고 시간이 다소 길지만 결과적으로 vector와 insert 재조합은 반응이 될 것들만 되고 안되는 것은 끝까지 되지 않기 때문이다.
- 참고문헌
분자생물학, George M. Malacinski 저, 심웅섭 외 7명 역,p 349~353
'기타- 비연재 > 전공' 카테고리의 다른 글
유전자 조작실험 3, 재조합 plasmid를 이용한 형질 전환 및 재조합 대장균 선별(예비) (0) | 2010.05.27 |
---|---|
생명공학실험 2주차 예비 (0) | 2010.05.15 |
생명공학실험 1주차 결과 (0) | 2010.05.15 |
[스크랩] 시계열 (0) | 2010.05.09 |
초임계유체 (0) | 2010.05.09 |